| Titel |
Klonierung, Zellkultur und Fluoreszenzmikroskopie
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| Title |
Cloning, Cell Culture and Fluorescence Microscopy |
| Schwerpunkt/Focus |
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| Sprache/Language |
englisch
deutsch |
| VV-Nr./Course No. |
134240 |
| Modulverantwortlich/Responsible |
Prof. Dr. Carsten Grashoff |
| Vertreter/Co-responsible |
Dr. Anna Chrostek-Grashoff |
| Anbieter/Teachers |
Prof. Dr. C. Grashoff, Dr. A. Chrostek-Grashoff |
| Typ/Type |
Vorlesung + Seminar + Praktikum |
| SWS/Semerster periods per week |
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| Arbeitslast(h)/Work load |
300 h |
| KP/Credit points |
10 KP |
| Zuordnung/Classification |
Vertiefungs-Modul |
| Semester/Semester |
WiSe |
| Studierende/Students |
BSc Biowissenschaften |
| Corona-Informationen/Corona-Information |
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| Zeit/Date |
Block I und II |
| Ort/Location |
Institut für Integrative Zellbiologie und Physiologie, Schlossplatz 5 |
| Beginn/Start |
23.10.2023, 10:00 Uhr, Schlossplatz 5, Raum 203 |
| Vorbesprechung/Obligatory pre-meeting |
keine |
| Voraussetzung/Prerequisite |
keine |
| Anmeldung/Registration |
Online Anmeldung |
| Leistungskontrollen/Performance assessments |
Laborprotokoll, Referat, Abschlussbericht |
| Termine f. Leistungskontrollen/Date for performance assessments |
nach Absprache |
| max. NP/Max. grade points |
200 NP |
| Ziele/Aims |
Durch die Durchführung eines eigenen (kleinen) wissenschaftlichen Projektes werden wichtige Kenntnisse und Fertigkeiten im Fachgebiet der molekularen Zellbiologie erworben. Nach einer theoretischen Einführung wird jeder Studierende mit HIlfe von Klonierungsverfahren ein eigenes cDNA-basiertes Expressions-Plasmid generieren. Dieses wird im Anschluss in Säugetierzellen zur Expression gebracht. Dabei werden wichtige Methode der Zellkultur erlernt. Danach werden die Zellen durch Immunfärbemethoden vorbereitet und mit Hilfe moderner Fluoreszenzmikroskopie selbstständig analysiert.
Neben dem Erlernen des wissenschaftlichen Arbeitens und dem Erwerb der fachlichen Kenntnisse wird vor allem das selbstständige Arbeiten im Labor eingeübt, ein eigenständiges Planen und selbstverantwortliches Handeln im Labor gefördert. Bei der Analyse der erhaltenen Daten wird die wissenschaftliche Urteilsfähigkeit geschärft, um aktuelle Forschungsthemen kritisch hinterfragen zu können. |
| Inhalte/Content |
a. Theoretische Grundlagen zum Thema Molekularbiologie, Zellkultur und Fluoreszenzmikroskopie (Woche 1)
b. Selbstständige Generierung eines Expressionsplasmids durch moderne Klonierungsverfahren (Woche 2-3)
c. Steriles Arbeiten in der Sicherheitswerkbank, Zellkulturverfahren und DNA Expression (Woche 4-5)
d. Immunofärbungen und Analyse der Zellen am konfokalen Fluorezenzmikroskop (Woche 5-6)
e. Lebenzell-Fluoreszenzmikroskopie (Woche 6-7)
f. Dateninterpretation, Bildanalyse und Anfertigung des Abschlussberichtes (Woche 7-8)
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| Methoden/Methods |
Selbstständiges Arbeiten im molekularbiologischen Labor und im Zellkulturlabor.
Erlernen moderner Mikroskopieverfahren und Datenanalysen. |
| Berufsrelevante und interdisziplinäre Komponenten/Occupational and interdisciplinary skills |
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| Voraussetzung für/Prerequisite for |
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| Präsenzpflicht/Compulsory presence |
ja |
| Plätze/Number of participants |
8 |
| Gruppengröße/Group size |
1 |
| Materialien/Materials |
Laborkittel, Laborbuch |
| Literatur/Literature |
Principles of Fluorescence Spectroscopy, 3rd edition, Joseph R. Lakowicz |
| Links |
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| Sonstiges/Further information |
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= Modul gehört zum SPP Imoplant / Module is part of the SSP Imoplant
= Modul gehört zum SPP Evolution /Module is part of the SSP Evolution
= Modul gehört zum SPP Bioanalytics and Biochemistry /Module is part of the SSP Bioanalytics and Biochemistry
= Modul gehört zum SPP Neuroscience and Behaviour /Module is part of the SSP Neuroscience and Behaviour
= Modul gehört zum SPP Quantitative Cell Biology /Module is part of the SSP Quantitative Cell Biology